instrukcjepdf.pl

Instrukcja obsługi systemu GoTaq Probe 1-Step RT-qPCR

Kompletny przewodnik po systemie GoTaq Probe 1-Step RT-qPCR. Instrukcja zawiera wytyczne dotyczące przechowywania odczynników, przygotowania mieszaniny reakcyjnej, optymalizacji parametrów oraz przeprowadzania cykli termicznych w trybach...

Spis treści

Najważniejsze informacje z instrukcji

System GoTaq Probe 1-Step RT-qPCR jest zoptymalizowany do testów ilościowych PCR w formacie sondy hydrolizującej. Umożliwia wykrywanie i relatywną kwantyfikację poziomów ekspresji RNA w jednej reakcji. System wykorzystuje technologię hot-start, co pozwala na przygotowanie reakcji w temperaturze pokojowej.

Przechowywanie i komponenty

Wszystkie komponenty systemu należy przechowywać w temperaturze od -30°C do -10°C i chronić przed światłem. W przypadku krótkotrwałego przechowywania i częstego użycia, mieszaninę GoTaq Probe qPCR Master Mix można przechowywać w temperaturze od +2°C do +10°C przez okres do 3 miesięcy, pod warunkiem ochrony przed światłem. Przed użyciem należy rozmrozić odczynniki (nie w podwyższonej temperaturze) i wymieszać je delikatnie (vortex 3-5 sekund).

Zapobieganie kontaminacji

Aby zminimalizować ryzyko kontaminacji, zaleca się:

  • Stosowanie wyznaczonych stref pracy oraz pipet dedykowanych do etapów przed i po amplifikacji.
  • Regularną zmianę rękawiczek.
  • Stosowanie końcówek do pipet z filtrem (aerosol-resistant).
  • Niezdejmowanie wieczek z płytek reakcyjnych po zakończeniu amplifikacji.

Protokół przygotowania mieszaniny reakcyjnej

Końcowa objętość reakcji wynosi 20µl. Procedura przygotowania:

  1. Rozmroź GoTaq Probe qPCR Master Mix i wodę wolną od nukleaz.
  2. Wymieszaj odczynniki za pomocą vortexu.
  3. Przygotuj mieszaninę reakcyjną (bez matrycy RNA), łącząc: GoTaq Probe qPCR Master Mix (10µl), GoScript RT Mix (0,4µl), startery (1µl każdy), sondę (1µl) oraz wodę (dopełnienie do 20µl).
  4. Dodaj odpowiednią objętość mieszaniny do probówek lub płytek PCR.
  5. Dodaj matrycę RNA (2-5µl).
  6. Uszczelnij płytkę i odwirować krótko przed umieszczeniem w instrumencie.

Warunki cykli termicznych

System obsługuje dwa tryby pracy:

  • Standardowy: Odwrotna transkrypcja (45°C, 15 min), Inaktywacja RT/Aktywacja polimerazy (95°C, 2 min), Denaturacja (95°C, 15 s), Wyżarzanie i elongacja (60°C, 1 min) - 40 cykli.
  • FAST: Odwrotna transkrypcja (45°C, 5 min), Inaktywacja RT/Aktywacja polimerazy (95°C, 2 min), Denaturacja (95°C, 3 s), Wyżarzanie i elongacja (60°C, 30 s) - 40 cykli.

Praktyczna pomoc

Typowe problemy

Kontaminacja krzyżowa próbek

Stosuj dedykowane strefy pracy, pipety do etapów przed amplifikacją oraz końcówki z filtrem. Nie otwieraj płytek po zakończeniu reakcji.

Niska wydajność amplifikacji

Optymalizuj stężenia starterów (zakres 200nM–1µM) i sondy (zakres 100–300nM) dla każdego zestawu.

Wymagana normalizacja sygnału

Dodaj barwnik referencyjny CXR do Master Mixu zgodnie z wymaganiami instrumentu (30nM dla niskiego poziomu lub 500nM dla wysokiego poziomu ROX).

Przed użyciem

  • Rozmroź odczynniki w temperaturze pokojowej (nie podgrzewaj).
  • Wymieszaj odczynniki za pomocą vortexu przez 3-5 sekund.
  • Sprawdź, czy instrument wymaga barwnika referencyjnego CXR.
  • Przygotuj mieszaninę reakcyjną bez matrycy RNA.
  • Zabezpiecz próbki przed światłem przed rozpoczęciem cykli termicznych.

Parametry w praktyce

CXR Reference Dye
Barwnik referencyjny o właściwościach spektralnych ROX, używany do normalizacji sygnału w niektórych instrumentach PCR.
Hot-start chemistry
Technologia pozwalająca na przygotowanie reakcji w temperaturze pokojowej bez przedwczesnej aktywności enzymów.

Zgodność modelu

  • System jest kompatybilny zarówno ze standardowymi, jak i szybkimi (FAST) programami cykli termicznych.
  • Wymaga instrumentu do PCR w czasie rzeczywistym (real-time PCR).

Autor opracowania

Anna Kowalska

Redaktorka treści użytkowych

Tworzy krótkie opisy instrukcji i porządkuje informacje techniczne tak, aby były zrozumiałe dla osób szukających manuala online.